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2006-04-15 00:00
Figure 7.24 Screen shot of a Java web page that shows protei
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Figure 7.23 Screen shots from a Java program.
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Figure 7.22 Circuit diagram for Endo16 transcription.
2006-04-15 00:00
Figure 7.21 Role of CG2, CG3, and CG4 on interaction between
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Figure 7.20 Repressor-sensitive portion of module A
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Figure 7.19 Role of Otx site in the output of module A
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Figure 6.41Significant changes in metabolomes when comparing
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Figure 7.18 CAT output (molecules per embryo) with different
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Figure 7.17 Module A and Bp showing protein binding sites
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Figure 7.16 The roles of Endo16 cis-regulatory element modul
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Figure 7.15 Regulation of module B activity
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Figure 7.14 Circuit diagram of the Endo16 cis-regulatory ele
2006-04-15 00:00
Figure 7.13 The role of module G
2006-04-15 00:00
Figure 7.12 Measurement of CAT protein produced in 20- to 72
2006-04-15 00:00
Figure 7.11 Effect of LiCl on the cis-regulatory element Con
2006-04-15 00:00
Figure 7.10 Repressive functions of modules F, E, and DC on
2006-04-15 00:00
Figure 7.9 Additional DNA constructs to elucidate the roles
2006-04-15 00:00
Figure 7.8 Three DNA constructs to elucidate the roles of mo
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Figure 7.7 Photomicrographs showing the location of CAT mRNA
2006-04-15 00:00
Figure 7.6 The first ten DNA constructs built by Davidson’s
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Figure 7.5 Endo16 cis-regulatory element (horizontal black l
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Figure 7.4 Endo16 transcription during sea urchin developmen
2006-04-15 00:00
Figure 7.3 Location and timing of Endo16 expression.
2006-04-15 00:00
Figure 7.2 Sea urchin S. purpuratus embryogenesis.
2006-04-15 00:00
Figure 7.1 Spatial difference between cis- and trans-regulat
2006-04-15 00:00
Figure 6.40 Capillary electrophoresis of single-cell proteom
2006-04-15 00:00
Figure 6.39 Variation between enzymes
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Figure 6.38 Measuring the rate of product formation from a s
2006-04-15 00:00
Figure 6.37 Coupling substrate to the array of microwells
2006-04-15 00:00
Figure 6.36 Microwell array manufacturing
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Figure 6.35 Detecting the targets of small molecules on prot
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Figure 6.34 Detection of protein-protein interactions on pr
2006-04-15 00:00
Figure 6.33 Comparison of two protein micro-arrays
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Figure 6.32 Antibody arrays detected fluorescently labeled a
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Figure 6.31 Reversible switch in metabolism
2006-04-15 00:00
Figure 6.30 Reversible metabolic pathway for ethanol and gal
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Figure 6.29 Quantification and identification of proteins b
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Figure 6.28Schematic of ICAT method
2006-04-15 00:00
Figure 6.27 ICAT labeling reagent
2006-04-15 00:00
Figure 6.26 Phosphorylation of Ste20 requires Cln2
2006-04-15 00:00
Figure 6.25 Quantifying relative levels of phosphorylation
2006-04-15 00:00
Figure 6.24 Quantifying differences in proteomes
2006-04-15 00:00
Figure 6.23 Cathepsin composition during phago-some maturati
2006-04-15 00:00
Figure 6.22 Localization of phagosome proteins
2006-04-15 00:00
Figure 6.21 Phagosome 2Dgel
2006-04-15 00:00
Figure 6.20 Protein identification through peptide fragment
2006-04-15 00:00
Figure 6.19 Tandem mass spectrometry for protein identificat
2006-04-15 00:00
Figure 6.18 Two-dimensional (2D) gel electrophoresis
2006-04-15 00:00
Figure 6.17 Protein interactions grouped by cellular compart
2006-04-15 00:00
Figure 6.16 Network of protein interactions with higher (bol
2006-04-15 00:00
Figure 6.15 Proteomics circuit showing the interactions of R
2006-04-15 00:00
Figure 6.14 Yeast two-hybrid method
2006-04-15 00:00
Figure 6.13 Functional consequences of protein conformation
2006-04-15 00:00
Figure 6.12 Structural method to discover new medications
2006-04-15 00:00
Figure 6.11 Structural basis for aquaporin function
2006-04-15 00:00
Figure 6.10 Structural proteomics of an Archaea
2006-04-15 00:00
Figure 6.9 Bar code analysis of biological processes
2006-04-15 00:00
Figure 6.8 Analysis of bar code DNA microarrays
2006-04-15 00:00
Figure 6.7 Bar code microarray
2006-04-15 00:00
Figure 6.6 Localization of epitope-tagged proteins
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