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一、PCR實驗室裝修知識
這里著重介紹PCR實驗室裝修的功能區劃分，建議從3方面來考慮，即：普通實驗區、污染控制區、氣流組織。
1.普通實驗區
包括產物分析區、擴增區、樣品制備區、試劑準備區這4個區域。
2.污染控制區
此區域的規劃有3套方案，第1套為各功能間相互串通，以套間方式進入人流/物流；第2套為設置獨立緩沖間，人流/物流分道，流程相鄰間設置物流傳遞窗；第3套為設置共用緩沖間/緩沖走廊。
3.氣流組織
各個區域之間應具備單相的實驗工藝流、物流、人流和氣流，形成單向流程的保護屏障，避免實驗之間的相互干擾，防止核酸氣溶膠對實驗過程造成污染產生假性結果。PCR實驗室并沒有嚴格的凈化要求，但是為避免各個實驗區域間交叉污染的可能性，宜采用全送全排的氣流組織形式。同時，要嚴格控制送、排風的比例以保證個實驗區的壓力要求。
PCR實驗室裝修的氣流組織需要從原始試劑混配室、DNA提取室、PCR擴增室、檢測室、送風口這5方面來考慮。
①原始試劑混配室：房間壓差為正壓，配備有潔凈工作臺，以防止其他功能間對本房間的污染。
②DNA提取室：房間壓差為負壓，配備有排風系統，以防止提取核酸產生的氣溶膠對工作人員的傷害及擴散污染。
③PCR擴增室：房間壓差為負壓，與DNA提取室一樣，配備有排風系統，以防止擴增產物造成的擴散污染。
④檢測室：房間壓差為負壓，與DNA提取室、PCR擴增室一樣，配備有排風系統，以防止相關污染。
⑤送風口：采用的是頂送風，側下回/排風方式。
二、PCR實驗室設計知識
這里著重介紹PCR走廊、傳遞窗這2方面的最新知識。
1、PCR走廊
PCR走廊并不是標配，進深不夠時不要做PCR走廊，且PCR走廊會增加交叉污染。
Tips：這4個分區(試劑儲存和準備區、標本制備區、核算擴增區、產物分析區)原本就不需連接在一起，且在物理空間上必須是完全相互獨立的，各區域無論在空間上還是在使用中，應當始終處于完全的分隔狀態，不能有空氣的直接相通。
2、傳遞窗
并非必須設置(只要不涉及潔/污分流就不需要設置傳遞窗)，但一般實驗機構/實驗人員喜歡設置。
Tips：傳遞窗的本質—同緩沖間，是物流的緩沖間。在PCR實驗室設計中，試劑準備和標本制備間是重點保護的區域，此處最好不要加傳遞窗，防止交叉污染。實驗中的污染風險主要來自于核酸擴增時的加樣行為，但由于操作在生物安全柜(起超凈臺的作用，最新做法)內進行，且確保空氣不外溢，因此不存在污染。
三、PCR實驗室的管理要點：
1、樣品制備區
這個區域專門用作樣品的制備，在制備和操作用于核酸提取的試劑時應該采取預防措施；
未設緩沖間時工作區域為負壓或減壓，可安裝排風系統。所有的器具在使用前應經過徹底清洗并消毒，防止交叉污染。主要設備有冰箱、生物安全柜（或潔凈工作臺、排風柜）、離心機、加樣器、振蕩器、恒溫水浴、上下水裝置、廢棄物容器、紫外燈。根據制備樣品的性質和要求決定操作臺是選用生物安全柜、潔凈工作臺還是排毒柜，如疾病控制中心、臨床醫學實驗室一般選用生物安全柜，植物轉基因、檢疫等可選用排毒柜樣品制備需要較高潔凈條件的選用潔凈工作臺。
1）PCR產物和帶有要擴增序列的產物DNA克隆不能在這個房間操作。
2）組織培養物、組織標本和血清樣品都帶進樣品準備間處理，以根據應用的需要提取DNA或RNA。
3）用于樣品處理的工具不能被用作普通分子克隆的工具，也不能用作操作靶序列。
4）DNA樣品應該用有專門的防護或正壓活塞式移液管操作，以防止在吸取樣品時有氣溶膠遺留。
5）大體積樣品應該用單獨包裝的無菌一次性移液管吸取。
6）管子打開前都要簡短離心以減少氣溶膠的產生，而且管子不能用力崩開，這樣會產生氣溶膠。
7）任何時候都應該穿實驗服和帶手套，手套要經常更換，尤其在抽提過程中每一步之間都要更換。實驗服要專門用于樣品準備間，經常清洗。
2、樣品準備和RNA-PCR
RNA-PCR的額外步驟需要額外的樣品操作，這樣增加了樣品之間污染的機會。為了避免這一問題，反轉錄一步可以在樣品準備區進行。在RNA-PCR中應用UNG以防止污染的方法也有報道。
3、前PCR區
必須有專門用于準備各種反應的區域，這個區域必須保持干凈，而且沒有來自克隆和樣品準備的污染。前PCR區必須要有試劑和準備，特別是專門用于前PCR區的正壓活塞式移液管。
4、PCR實驗室試劑的操作
未設緩沖間的試劑儲存和準備區，工作區域為正壓。用于擴增的試劑應冰凍儲存。主要設備有天平、冰箱、離心機、加樣器、振蕩器、紫外燈。
1）所用的所有溶液都應該沒有核酸和（或）核酸酶（DNase和RNase）污染。
2）所有PCR試劑中使用的水都應該是高質量的－新鮮蒸餾的去離子水，用0.22μm過濾的，并且是高壓滅菌。
3）在20℃到25℃貯存的試劑建議加點像疊氮鈉一類的抗微生物劑，在擴增試劑或樣品制備試劑中加入貯存的試劑0.025%的疊氮鈉不抑制擴增反應。
4）所用試劑都應該以大體積配制，實驗一下看試劑是否滿意，然后分裝成僅夠一次使用的量進行貯存。
5）所有試劑和樣品準備過程中都要使用一次性滅菌的瓶子和管子。
6）新配制的試劑在用于準備新的標本之前應該加以檢驗。
7）樣品準備和前PCR區所使用的移液管在不使用時都應該小心保存。
5、在前PCR區建立PCR混合物
1）可以把即刻可用的“主混合物”溶液配好、分裝并保存在-20℃或4℃，在實驗室只涉及到擴增一種或少數幾種特異序列時這樣做很有用。
2）如果你的實驗室使用多套引物，以致于配制包括所有試劑的單一反應混合物不夠經濟，可以考慮分裝保存夠一天的PCR成分。
3）作為一個規則，應該保存一套陰性、弱陽性和強陽性對照樣品來分析樣品配制和PCR前過程的效率和潔凈程度。而且，你也希望通過使用一個已知的弱陽性樣品來驗證你的樣品緩沖液以證明里面不含擴增抑制物。
4）陰性樣品要與每組樣品同時做，以分析是否存在樣品與樣品之間的污染以及是否存在PCR產物的污染，陰性對照應該包括核酸以外的所有試劑。
5）當做陽性對照時，有兩個理由決定了應該使用最少數量的核酸。
6）由于必須有對照反應，對照模板的特點應該予以考慮。
6、后PCR區
PCR完成以后，需要分析樣品并解釋數據，應該留出一個專門用于反應后處理樣品的地方。后PCR活動中使用的所用試劑、一次性耗材和儀器都必須是專門用于這一目的，決不能把實驗室這一區域的試劑或儀器用于任何前PCR活動。
