實驗原理：細胞中的DNA受1NHC1，60℃水解作用以后，核酸中的嘌呤堿很快完全被除掉，使脫氧核糖中潛在的醛基獲得自由狀態(tài)。水解后，組織要經(jīng)水洗再移至希夫（Schiff）試劑 中，希夫試劑 即同露出來的醛基發(fā)生反應(yīng)，呈現(xiàn)紫紅色。這個反應(yīng)是Feulgen在1942年提出來的，是DNA的一個特異性檢查法。
水解的時間很重要，因為核酸的水解有兩個過程，第一，漂呤堿很快被除掉，脫氧核糖中潛在的醛基顯露出來，第二，組蛋白和核酸愈來愈多地被除掉。在短時間的水解作用以后，第一個過程占優(yōu)勢，這時候用希夫試劑染色，染色體的染色作用最強。隨著水解作用的繼續(xù)進行，第二個過程逐漸變成優(yōu)勢，因此水解液中的希夫反應(yīng)增強，而染色體中的希夫應(yīng)減弱。最后，第二個過程超過第一過程時，染色體也隨之停止反應(yīng)。
希夫試劑是堿性品紅———亞硫酸溶液，呈無色。與DNA醛基反應(yīng)后，使堿性品紅恢復(fù)原來的紅色。
二、實驗?zāi)康模河^察蠶豆根尖細胞或其它根尖細胞內(nèi)染色體中的DNA，以及染色體在有絲分裂中的行為，掌握Feulgen染色方法。
三、實驗材料：上次實驗制成了石蠟切片。
四、實驗準備：
1．用具 立式染色缸一套，鑷子，蓋玻片，小漏斗，鐵架，毛邊紙，玻璃棒，顯微鏡，恒溫水浴 鍋，溫度計，燒杯，棕色瓶，黑紙。
2．玻璃器皿的清洗 主要是染色缸的清洗，一般用肥皂粉洗，用水沖凈即可，如不能洗凈時，要用洗液浸泡后，再沖洗，自來水洗后，再用少量蒸餾水過洗一次。盛放100%酒精、二甲苯的染色缸必須干燥，缸蓋內(nèi)緣必須涂以幾士林，以防止蒸發(fā)和收水分，影響濃度。染色缸上要貼上標簽。
3．實驗所需藥口及配制
濃鹽酸（36—38%），堿性品紅，偏重亞硫酸鈉（Na₂ S₂ O₅ ）;
亞硫酸鈉（Na₂ SO₃ ）,固綠（fast green），加拿大中性樹膠乙醇（30—100%），二甲苯。
藥品配制：
1各種濃度的乙醇配制.
21NHCI配制：取濃HCI 82.5毫升加蒸餾水至1000毫升，搖勻。
3Sciff 試劑的配制
0．5克堿性品紅，加到已經(jīng)煮沸的100毫升蒸餾水中，再煮沸3—4分鐘，待溶液冷卻到50℃時過濾，再等溶液冷到25℃以下時，加入10毫升的1NHCI和1。5克偏重亞硫酸鈉，裝在棕色瓶中，塞緊瓶子，用黑紙包好，放在暗處，第二天觀察，溶液還是淡紅色就不能用，只得重配。
偏重亞硫酸鈉與1NHCI反應(yīng)，放出SO₂ ，SO₂ 與堿性品紅反應(yīng)，生成堿性品紅--亞硫酸溶液，呈無色。
4漂染液的配制
先配10%的亞硫酸鈉溶液。
把10%亞硫酸鈉溶液10毫升加200毫升蒸餾水，再加10毫升1NHCI，即成漂當液。
5固綠染色液
0.5克固綠溶于100毫升95%乙醇溶液。
五、實驗步驟：
 
2．水解 先在恒溫水浴 箱中準備好恒溫60℃的1NHCI。注意一定要控制好溫度不能過高，高了醛基要破壞，低了小解不充分，醛基不能釋放出來。水解的時間長短要根據(jù)材料，以及固定液的種類而定。根據(jù)試驗結(jié)果，取一個適當時間。
 
因加拿大樹膠溶于二甲苯，所以片子一定要經(jīng)二甲苯透明后才進行封片，操作方法如下：
1.用鑷子從二甲苯中取出載玻片，以毛邊紙吸干余液。
2.左手開啟樹膠瓶，右手用瓶中玻璃棒蘸取樹膠滴于載玻片上，并隨即蓋好瓶蓋。樹膠的用量視蓋玻片大小而定。要使樹膠在蓋玻片下滿布，不發(fā)生過多或不足。
3鑷取潔凈蓋玻片，以一邊澆于載玻片上，然后徐徐放下，使樹膠布滿蓋玻片與載玻片之間。產(chǎn)生氣泡的原因是覆蓋太快樹膠用量不足，或樹膠過稠。氣泡侵入后，妨礙鏡檢，且使標本褪色。如有氣泡產(chǎn)生，則可以在靠近氣泡的一邊再滴樹膠一滴，然后輕壓蓋玻片，使氣泡逸出。
片子封片后，放在切片木框上，讓其自然干燥，即可保存。