透析袋預處理方法

（1）將透析管剪成適當長度，10-20cm的小段，即形成透析袋 

（2）在大體積2％（m/V）碳酸氫鈉和1mmol/LEDTA（PH*8.0）中將透析袋煮沸10min 

（3）將透析袋用蒸餾水徹底漂洗 

（4）將透析袋置1mmol/L EDTA（PH*8.0）中煮沸10min 

（5）將透析袋冷卻，存放于4攝氏度，應確保透析袋始終浸沒在液體中。 

重要：從此步起用透析袋時一定要帶手套操作 

（6）在使用前要用蒸餾水將透析袋里外加以清洗。

用過的透析袋保存前需要怎么處理？

 

      用生理鹽水浸泡以去掉蛋白，并用蒸餾水清洗干凈，然后置50％乙醇中保存即可；用完以后,要徹底洗干凈,透析袋也可以保存在0.1%疊氮鈉（可防止微生物生長）里；0.05%-0.1%疊氮鈉，或者1mM EDTA，或者50％甘油中4度保存，公司的人建議前兩種保存比較好！

 

透析和透析袋的處理

 

     透析只需要使用專用的半透膜即可完成。通常是將半透膜制成袋狀，將生物大分子樣品溶液置入袋內，將此透析袋浸入水或緩沖液中，樣品溶液中的大分子量的生物大分子被截留在袋內，而鹽和小分子物質不斷擴散透析到袋外，直到袋內外兩邊的濃度達到平衡為止。保留在透析 袋內未透析出的樣品溶液稱為"保留液"，袋（膜）外的溶液稱為"滲出液"或"透析液"。透析的動力是擴散壓，擴散壓是由橫跨膜兩邊的濃度梯度形成的。透析 的速度反比于膜的厚度，正比于欲透析的小分子溶質在膜內外兩邊的濃度梯度，還正比于膜的面積和溫度，通常是4℃透析，升高溫度可加快透析速度。

 

透析膜可用動物膜和玻璃紙等，但用的最多的還是用纖維素制成的透析膜， 目前常用的是美國Union Carbide （聯合碳化物公司）和美國光譜醫學公司生產的各種尺寸的透析管，截留分子量MwCO（即留在透析袋內的生物大分子的最小分子量，縮寫為MwCO）通常為1 萬左右。商品透析袋制成管狀，其扁平寬度為23 mm～50 mm不等。為防干裂，出廠時都用10％的甘油處理過，并含有極微量的硫化物（0.1%）、重金屬和一些具有紫外吸收的雜質，它們對蛋白質和其它生物活性物質有害，用前必須除去。

 

   透析袋的處理：可先用50％乙醇煮沸1小時，再依次用50％乙醇、0.01 mol/L碳酸氫鈉和0.001 mol/L EDTA溶液洗滌，最后用蒸餾水沖洗即可使用。實驗證明，50％乙醇處理對除去具有紫外吸收的雜質特別有效。（也可先在大體積的2%（W/V）碳酸氫鈉和 1mmol/L EDTA（pH 8.0）中將透析袋煮沸10分鐘，用蒸餾水徹底清洗后，再放在1mmol/L EDTA（pH 8.0）中將之煮沸10分鐘。）使用后的透析袋洗凈后可存于4℃蒸餾水中，確保透析袋始終浸沒在溶液內。若長時間不用，可加少量NaN2，以防長菌。從此 時起取用透析袋必須戴手套。洗凈涼干的透析袋彎折時易裂口，用時必須仔細檢查，不漏時方可重復使用。

    新透析袋 如不作如上的特殊處理，則可用沸水煮五至十分鐘，再用蒸餾水洗凈，即可使用。使用時，一端用橡皮筋或線繩扎緊，也可以使用特制的透析袋夾夾緊，由另一端灌滿水，用手指稍加壓，檢查不漏，方可裝入待透析液，通常要留三分之一至一半的空間，以防透析過程中，透析的小分子量較大時，袋外的水和緩沖液過量進入袋內 將袋漲破。含鹽量很高的蛋白質溶液透析過夜時，體積增加50％是正常的。為了加快透析速度，除多次更換透析液外，還可使用磁子攪拌。透析的容器要大一些， 可以使用大燒杯、大量筒和塑料桶。小量體積溶液的透析，可在袋內放一截兩頭燒園的玻璃棒或兩端封口的玻璃管，以使透析袋沉入液面以下。

 

    檢查透析效果的方法是：用1％ BaCl2檢查（NH4）2SO4，用1％ AgNO3 檢查NaCl、KCl等

透析膜 （前處理方法如下）：

1. 戴手套把透析膜剪成適當長度，浸在蒸餾水中 15 min 泡軟。 

2. 浸入 10 mM sodium bicarbonate 中，并加熱至 80℃，一邊攪拌至少 30 min。 

3. 換到 10 mM Na2·EDTA 中浸泡 30 min，以新鮮的 EDTA 同樣方法處理三次。 

4. 再用 80℃ 蒸餾水洗 30 min，然后換到 20% 酒精中，放在 4℃ 冰箱中保存。