植物體內的可溶性糖主要指能溶于水及乙醇的單糖和寡聚糖。苯酚法測定可溶性糖的原理是:糖在濃硫酸作用下,脫水生成的糠醛或羥甲基糠醛能與苯酚縮合成一種橙紅色化合物,在10~100μg范圍內其顏色深淺與糖的含量成正比,且在485nm波長下有最大吸收峰,故可用比色法在此波長下測定。苯酚法可用于甲基化的糖、戊糖和多聚糖的測定,方法簡單,靈敏度高,基本不受蛋白質存在的影響,并且產生的顏色穩定160min以上。
【儀器 與用具】
分光光度計;電爐;鋁鍋;20ml刻度試管;刻度吸管5ml 1支,1ml 2支;記號筆;吸水紙適量。
【試劑 】
1.90%苯酚溶液 稱取90g苯酚(AR),加蒸餾水10ml溶解,在室溫下可保存數月;
2.9%苯酚溶液 取3ml 90%苯酚溶液,加蒸餾水至30ml,現配現用;
3.濃硫酸(比重1.84);
4.1%蔗糖標準液 將分析純蔗糖在80℃下烘至恒重,精確稱取1.000g。加少量水溶解,移入100ml容量瓶中,加入0.5ml濃硫酸,用蒸餾水定容至刻度;
5.100μg/ml蔗糖標準液 精確吸取1%蔗糖標準液1ml加入100ml容量瓶中,加水定容。
【方法】
1.標準曲線的制作
取20ml刻度試管 11支,從0~10分別編號,按表24-1加入溶液和水。
表24-1 各試管 加溶液和水的量
管 號 |
0 |
1~2 |
3~4 |
5~6 |
7~8 |
9~10 |
100μg/ml蔗糖液(ml) |
0 |
0.2 |
0.4 |
0.6 |
0.8 |
1.0 |
水(ml) |
2.0 |
1.8 |
1.6 |
1.4 |
1.2 |
1.0 |
蔗糖量(μg) |
0 |
20 |
40 |
60 |
80 |
100 |
然后按順序向試管內加入1ml 9%苯酚溶液,搖勻,再從管液正面快速加入5ml濃硫酸,搖勻。比色液總體積為8ml,在恒溫下放置30min,顯色。然后以空白為參比,在485nm波長下比色測定,以糖含量為橫坐標,光密為縱坐標,繪制標準曲線,求出標準直線方程。
2.可溶性糖的提取
取新鮮植物葉片,擦凈表面污物,剪碎混勻,稱取0.10~0.30g,共3份,或干材料。分別放入3支刻度試管中,加入5~10ml蒸餾 水,塑料薄膜封口,于沸水中提取30min(提取2次),提取液過濾入25ml容量瓶中,反復沖洗試管及殘渣,定容至刻度。
3.測定 吸取0.5ml樣品液于試管中(重復2次),加蒸餾 水1.5ml,同制作標準曲線的步驟,按順序分別加入苯酚,濃硫酸溶液,顯色并測定光密度。由標準線性方程求出糖的量,按下式計算測試樣品中糖含量。
可溶性糖含量(mg/g)= [C×(V/a)×n]/(W×103 )
式中 C-標準方程求得糖量(μg);
a-吸取樣品液體積(ml);
V-提取液量(ml);
n -稀釋倍數;
W-組織重量(g)。