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牛傳染性鼻氣管炎微量血清中和試驗

放大字體  縮小字體 發布日期:2006-06-27

(一)材料及試劑

1.器材

⑴細胞培養板:滅菌的國產96孔或40孔平底聚苯乙烯塑料板或進口96孔細胞培養板。

⑵50μl、100μl、300μl微量加樣器,滅菌的塑料滴頭。

⑶無菌透明膠帶,其密度與塑料板一致。

⑷滅菌的離心管

⑸倒置顯微鏡

2.IBR Baitha—Nu/67弱毒株凍干毒,標準陽性血清,標準陰性血清,均由指定單位供應。

3.細胞培養液

Eagles MEM 45%

0.5%水解乳蛋白-Earle液 45%

犢牛血清 10%

谷氨酰胺 0.03%

青、鏈霉素各200μg/ml

用7%NaHCO3液調pH6.8~7.0。

(二)操作方法

1.細胞制備 滅菌采取犢牛腎或睪丸,按常規胰蛋白酶消化法制備牛腎(BK)或睪丸(BT)細胞,置37℃溫箱培養,長成良好單層細胞備用。一般使用次代細胞,但不超過4代。

2.病毒抗原制備 將IBR Baitha—Nu/67弱毒株凍干毒用LE(0.5%水解乳蛋白—Earle液)作10倍稀釋,取長成良好的單層細胞(BK或BT),用Earle’s液洗一次后,按原培養液1/10的量接毒。置37℃溫箱吸附1h,然后加入pH7.1~7.2含青、鏈霉素200g/μgml的LE液至原培養液量,37℃培養,待80%~90%出現典型IBR病變時收獲培養物,凍融2次后,3 000r/min離心10min,其上清即為病毒抗原。測定病毒滴度(TCID)并分裝小瓶,貯于-70℃備用。半年內滴度保持不變。

3.病毒滴度測定 將制備的病毒抗原,用pH7.0~7.2的LE液作10倍遞增稀釋至10-7,每病毒稀釋滴度液接種細胞培養板4孔,每孔50μl,隨后每孔加入細胞懸液(50~60萬細胞/ml)10μl和細胞培養液50μl。設4孔細胞對照。用透明膠帶封板,置37℃培養。觀察1周,每天記錄細胞病變情況。

細胞培養半數感染量(TCID50)的確定按Reed-Muench方法計算,即:

TCID50=高于50%死亡率的病毒稀釋度的對數 距離比值×稀釋倍數(10)的對數。

4.無菌采集被檢血清,不加任何防腐劑。各種血清均56℃滅能30min。

5.將一瓶已知滴度IBR病毒抗原,用pH7.0~7.2的LE液稀釋成100TCID50/0.05ml,取0.3ml與等量的被檢血清于小試管中,37℃溫箱中和1h。

6.將已中和的被檢血清—病毒混合液加入培養板孔中,每個樣品接種4孔,每孔100ul。再于每一樣品孔中加入100μl細胞懸液,用透明膠帶封板,37℃培養。

7.每次試驗時,均設立以下對照:

(1) 標準陽性血清 抗原,標準陰性血清 抗原,其操作程序同試驗組。

(2) 被檢血清毒性對照:每份被檢血清樣品接種2孔,每孔50μl,補加細胞培養液50ml,再加細胞懸液100μl。

(3) 細胞對照:每孔加100μl細胞懸液,補加細胞培養液100μl。

(4) 實際使用病毒抗原工作量的測定:將病毒抗原工作溶液(100TCID50/0.05μl)作10倍遞增稀釋至10-3,每個稀釋度接種4孔,每孔50μl,補加細胞培養液50μl,再加細胞懸液100μl。計算本次試驗每0.05ml中TCID50的實際含量。

(三)結果判定

1.接種后72h判定結果 當病毒抗原工作液對照、標準陰性血清對照均出現典型細胞病變。標準陽性血清對照無細胞病變,被檢血清對細胞無毒性,細胞對照正常病毒抗原實際含量在30~300TCID50時,方能判定,否則被認為無效。

2.判定標準 未經稀釋的被檢血清能使50%或50%以上細胞孔不出現病變者判為陽性。

 
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