凝膠層析又稱為分子篩層析或凝膠過濾。具有分子篩作用的物質很多,如浮石、瓊脂、瓊脂糖、聚乙烯醇、聚丙烯酰胺、葡聚糖凝膠等。以葡聚糖凝膠應用最廣,商品名是sephadex型號很多,從G10到G200,它的主要應用范圍是:①分級分離各種抗原與抗體;②去掉復合物中的小分子物質。如除鹽、熒光素和游離的放射性同位素以及水解的蛋白質碎片;③分析血清中的免疫復合物;④分子量的測定。
(一)原理
凝膠是一種多孔性的不帶表面電荷的物質,當帶有多種成分的樣品溶液在凝膠內運動時,由于它們的分子量不同而表現出速度的快慢,在緩沖液洗脫時,分子量大的物質不能進入凝膠孔內,而在凝膠間幾乎是垂直的向下運動,而分子量小的物質則進入凝膠孔內進行“繞道”運行,這樣就可以按分子量的大小,先后流出凝膠柱,達到分離的目的。
(二)葡聚糖凝膠的種類與性能
葡聚糖又名右旋糖酐,在它們的長鏈間以三氯環氧丙烷交聯劑交聯而成。葡聚糖凝膠具有很強的吸水性,交聯度大,吸水性小,相反交聯度小,吸水性大。商品名以SephadexG表示,G值越小,交聯度越大,吸水性越小,G值越大,交聯度越小,吸水性就越大,二者呈反比關系,G值大約為吸水量的10倍。由此可以根據床體積而估算出葡聚糖凝膠干粉的用量。
表 Sephadex1的種類與特性
型號
|
分離范圍
(分子量)
|
吸水量
(ml/g)
|
最小溶脹時(h)
20℃~25℃ 100℃
|
床體積(ml)/干凝膠(mg)
|
G10
|
<700
|
1.0±0.1
|
3 1
|
2~3
|
G15
|
<1 500
|
1.5±0.2
|
3 1
|
2.5~3.5
|
G25
|
<5 000
|
2.5±0.2
|
3 1
|
4~6
|
G50
|
1500~20 000
|
8.0±0.3
|
3 1
|
9~11
|
G75
|
3 000~70 000
|
7.5±0.5
|
24 1
|
12~15
|
G100
|
4 000~15 000
|
10.0±1.0
|
72 1
|
15~20
|
G150
|
5 000~800 000
|
15.0±1.5
|
72 1
|
20~30
|
G200
|
5 000~30 0000
|
20.0±2.0
|
72 1
|
30~40
|
G25、G50有四種顆粒型號:粗(100µ~300µ)、中(50µ~150µ)、細(20µ~80µ)和超細(10µ~40µ)。G75~G200又有兩種顆粒型號:中(40µ~120µ),超細(10µ~40µ)。顆粒越細,流速越慢,分離效果越好。
表 DEAE-纖維素與Sephadex1比較
項 目
|
DEAE纖維素
|
Sephadex
|
交換量
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小
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較大
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非特異性吸附
|
較大
|
小
|
分離純度
|
較好
|
好
|
分離時間
|
較粗
|
較長
|
應用范圍
|
較窄
|
較寬
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預處理
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繁瑣
|
方便
|
(三)試驗方法
1.凝膠的選擇 根據層析物質分子量的大小選擇不同型號的凝膠,如除鹽和除游離的熒光素,則可選用粗、中粒度的G28或G500,G250多用于分離蛋白質單體,G200多用于分離蛋白質凝膠聚合體等。
2.凝膠的預處理 稱取適量的凝膠加入過量的緩沖液在冰箱(或室溫)中充分膨脹,或在沸水中煮,膨脹時間應根據不同型號的凝膠而定。
表 凝膠量與型號和層析柱大小與規格及凝膠用量
層析柱規格
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凝膠的規格和用量(g)
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直徑(cm)
|
高(cm)
|
容量(ml)
|
G25
|
G50
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G100
|
G200
|
0.9
|
15
|
9.5
|
2.5
|
1
|
0.6
|
0.3
|
0.9
|
30
|
19
|
5
|
2
|
1.2
|
0.6
|
0.9
|
60
|
38
|
10
|
4
|
2.5
|
1.2
|
1.6
|
20
|
40
|
10
|
4
|
2.5
|
1.2
|
1.6
|
40
|
80
|
20
|
8
|
5.0
|
2.4
|
1.6
|
70
|
140
|
35
|
14
|
9.0
|
4.4
|
1.6
|
100
|
200
|
50
|
20
|
12.5
|
6
|
2.6
|
40
|
210
|
50
|
20
|
12
|
7
|
2.6
|
70
|
370
|
90
|
35
|
20
|
12
|
2.6
2.6
|
100
60
|
530
1 000
|
130
250
|
50
110
|
30
70
|
17
35
|
為使粒子均勻一致需進行浮選,即加入凝膠粒子后,輕輕攪拌,靜置20min,傾去沉淀的粒子,如此反復數次即可。
3.裝柱 層析柱的選擇一般根據分離樣品的種類和樣品的數量而定。純化蛋白質時,柱床體積應為樣品體積的25~100倍。去鹽、游離熒光素約為樣品體積的4~10倍。柱太短,影響分離效果。柱長一些,分離效果好,但柱太長,則延長分離時間,樣品也稀釋過度。層析柱的內徑也要選擇適當。內徑過細,會發生“器壁效應”,即靠近管壁的流速要大于中心的流速影響分離效果。所以層析柱的內徑和高度應有一定的比例。對于除鹽來說應為1︰5~1︰25;對于純化蛋白質來說應為1︰20~1︰100。
裝柱過程基本同離子交換層析柱。
4.加樣與洗脫 樣品體積不宜過多,最好為床體積的1%~5%,最多不要超過10%。樣品濃度也不宜過大,濃度過大粘度大,分離效果差,一般不超過4%。
洗脫液應與膨脹一致,否則更換溶劑,凝膠體積會發生變化,影響分離效果。洗脫液要有一定的離子強度和pH值。分離血清蛋白常用0.02~0.1Mol/L pH 6.9~8.0的PBS液(0.14Mol/L NaCl)和0.1Mol/L pH8.0Tris-HCl緩沖鹽溶液(0.14Mol/L NaCl)。
5.洗脫液收集 同離子交換層析。
6.凝膠柱的重復使用與保存 當樣品的各組分全部洗脫下來之后,即可加入新的樣品,繼續使用。保存方法有三種:
⑴ 在液相中保存最方便,即于凝膠懸液中加入防腐劑(一般為0.02%N2N3或0.002%洗必泰)或高壓滅菌后4℃保存。此法至少可以保存半年以上。
⑵ 用完后,以水沖洗,然后用60%~70%酒精液沖洗,凝膠體積縮小,即在半收縮狀態下保存。
⑶ 長期不用者,最好以干燥狀態保存,即水洗凈后,用含乙醇的水洗,逐漸加大乙醇用量,最后用95%的乙醇洗,可全部去水,再用乙烯去除乙醇,抽濾干,于60℃~80℃干燥后保存。