（一）原理
等電聚焦技術是一種根據樣品的等電點不同而使它們在pH梯度中相互分離的一種電泳技術。
本法的分辯率極高，所以在進行等電聚焦電泳時，要求樣品不能過于復雜，一般應經其他方法（如層析法）提純后再進行等點聚焦，才能得到比較滿意的結果。如利用人的純IgG再經過等電聚焦電泳，可以滿意地分離IgG的四個亞類。如IgG2濃縮于pH7.0的部位，IgG3濃縮于pH8.0~9.0的范圍內，IgG4則濃縮于pH6.0以下的部位，而IgG則分布于全部pH范圍，且只有IgG1能存在于pH9.0以上的部位。
等電聚焦電泳與其他分離方法結合起來，將是一項很有前途的分析鑒定和制備樣品的好技術。
（二）器材與試劑配制
1．聚焦柱 有成品出售，分110ml和440ml兩種。
2．電源 0V~1 200V可調20W的直流穩壓電源。
3．載體兩極電解質 市售25ml瓶裝，濃度為40％或20％（W/V），pH范圍為2.5~11，也有其它pH范圍的，可根據實驗條件選擇購買。
4．蔗糖（分析純）
1． 電極液的配制見表：
表 正電極緩沖液的配制
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正極在中心管內
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正極在柱頂
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磷酸
或硫酸
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0.05（0.2）ml或1（4）ml
1Mol/L 酸溶液
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0.025（0.1）ml或0.5（2）ml
1Mol/L 酸溶液
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H2O
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15（56）ml
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5（25）ml
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蔗糖
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11（44）g
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表2-3 負極緩沖液的配制
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負極在中心管
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負極在柱頂
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氫氧
化鈉
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0.1（0.4）g或1（4）ml
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0.05（0.2）g或0.5（2）ml
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2Mol/L 溶液
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2Mol/L 溶液
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蒸餾水
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14（56）ml
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5（25）ml
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蔗糖
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11（44）g
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此配制用量為最大用量，一般用1/5的量即可。括號內為440ml聚焦柱型號所用量配方。
6．重、輕液的配制與混合
⑴重、輕液的配制：配制方法見表：
表 重、輕液的配制方法
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110ml柱
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440ml柱
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載體40％（ml）
水及蛋白質溶液（ml）
蔗糖（g）
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重液
1.9
37
26
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輕液
0.6
51.5
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重液
7.6
148
104
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輕液
2.4
206
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此表為梯度混合器所用量，如用手工混合法則應相應適當增加20％。
⑵重、輕液的混合：有條件的可采用梯度混合器裝柱。手工混合法操作如下：取24支試管（440ml聚焦柱則應取46支試管）按2-5表各加入重、輕液，充分混勻。
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試管號
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重液（ml）
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輕液（ml）
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試管號
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重液（ml）
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輕液（ml）
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1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
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4.6
4.4
4.2
4.0
3.8
3.6
3.4
3.2
3.0
2.8
2.6
2.4
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0.0
0.2
0.4
0.6
0.8
1.0
1.2
1.4
1.6
1.8
2.0
2.2
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13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
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2.2
2.0
1.8
1.6
1.4
1.2
1.0
0.8
0.6
0.4
0.2
0.0
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2.4
2.6
2.8
3.0
3.2
3.4
3.6
3.8
4.0
4.2
4.4
4.6
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（二）操作方法
1．決定電極的極性 如pH梯度范圍在6以下時，則聚焦柱底的電極為正極。如pH梯度的范圍在6以上時，則柱底為負極。原因是蔗糖濃度越大，電導越小，所以在等電點pH6～7的載體處，應該避免蔗糖濃度最大的部位。
2．裝柱 按電極的極性與電極液的要求裝柱。將聚焦柱垂直放置，先注入底部電極液，打開中心管下端的活塞，從中心管上端，用帶長膠管的注射器注入電極液，使液面在中心管下部開口處之上達1cm處即可。
3．注入載體溶液 加完后應使電極液仍浸沒中心管的下部開口，不使電極與載體溶液直接接觸。
4．加重、輕混合液 從1號試管加起，用注射器沿管壁緩緩加入，流速約3ml/min，全部重、輕混合液加完后，再在上部加電極液，使上部電極浸沒。
5．連接冷凝水管。
6．電泳 電壓300V。開始電泳時，由于載體分子都不處于等電狀態，所以它們都帶電，在電場影響下向各自的等電點移動，因此開始時電流較大，以后逐漸減小。所以在開始時電壓可稍低一些。電泳結束時電流約為0.30mA，電泳時間2～3天。
7．樣品的收集 斷電后，關閉中心管下端活塞以免電極液流出，放入樣品，流速2ml/min為宜。以部分收集器收集，每管2ml。
8．測每管的pH值和蛋白含量，將相近pH的同一蛋白質的管合并。
9．將分離的每一樣品成分過SepHadexG25（或G50），將蛋白質與載體分離開來。
