常用的基因轉(zhuǎn)染技術是將外源基因?qū)氚屑毎枰欢ǖ妮d體和導入方法，基因轉(zhuǎn)技術則是將純化的含有靶基因的質(zhì)粒DNA送入細胞內(nèi)，并在細胞內(nèi)表達。轉(zhuǎn)染方法有多種，根據(jù)不同的細胞，貼壁或懸浮細所可選用不同的方法，其目的是要達到設置轉(zhuǎn)染效率，影響轉(zhuǎn)染產(chǎn)率的因素有多種，包括轉(zhuǎn)染方法、操作技術、質(zhì)粒DNA的純度、靶細胞的生長狀態(tài)等，下面重點介紹向幾種常用的轉(zhuǎn)染技術：
被用于作靶基因轉(zhuǎn)染的細胞，其生長狀態(tài)如何，將直接決定了基因轉(zhuǎn)染效率。如為貼壁生長的細胞，一般要求在轉(zhuǎn)染前一日，必需應用胰酶處理成單細胞懸液，重新接種于培養(yǎng)皿或瓶，細胞密度以鋪滿培養(yǎng)器皿的60%為宜，轉(zhuǎn)染當日，在轉(zhuǎn)染前4小時換一將近新鮮培養(yǎng)液。對于懸浮細胞，也需在轉(zhuǎn)染前4小時換一次新鮮培養(yǎng)液。
用于轉(zhuǎn)染的質(zhì)粒DNA必須無蛋白質(zhì)，無RNA和其了化學物質(zhì)的污染，OD260/280比值應在1.8以上。應用酚-氯仿抽提法制備的質(zhì)粒DNA一般難以達到此標準，目前大多采用進口的術提取純化試劑盒。
具體的基因轉(zhuǎn)染技術有鱗酸鈣介導的轉(zhuǎn)染法、DEAE葡聚糖介導轉(zhuǎn)染法、脂質(zhì)體介導轉(zhuǎn)染法及電擊基因轉(zhuǎn)導塵等。靶基因被導入細胞后，一般在轉(zhuǎn)染后48小時，靶基因即在細胞內(nèi)表達。根據(jù)不同的實驗目的，48小時后即可進行靶基因表達的檢測等實驗。如若建立穩(wěn)定的細胞系，則可對靶細胞進行篩選，根據(jù)不同基因載體中所含有的抗性標志選用相應的藥物，最常用的直核表達基因載體的標志物有潮霉素（hygromycin）和新霉素（neomycin）。